Protozoários em cães: onde encontrar e como diagnosticar
A pergunta sobre em qual material biológico dos cães a presença desse protozoário é mais comum do que parece no dia a dia clínico. A resposta varia conforme o protozoário em questão, e isso é o que realmente importa. Vou listar os principais, os materiais de coleta adequados e os problemas que todo mundo encontra na prática.
Em qual material biológico dos cães a presença desse protozoário
O Leishmania infantum, por exemplo, é detectado principalmente em esfregaços de medula óssea, linfonodo e pele. O material mais sensível para PCR é a medula óssea, mas o esfregaço de linfonodo também funciona bem. Já a Giardia intestinalis aparece em fezes, e o diagnóstico direto por exame coprológico de fezes frescas ainda é o padrão, apesar da baixa sensibilidade do método direto. O Toxoplasma gondii pode ser encontrado em sangue, líquor, aspirado de linfonodo e fluidos corporais. O Trypanosoma cruzi é mais em sangue periférico durante a fase aguda. No campo, o que vejo é gente coletando fezes de cão com suspeita de leishmaniose e esperando resultado positivo. Não funciona. A sensibilidade cai drasticamente quando você não usa o material certo. Medula óssea ou tecido de linfonodo são muito superiores para Leishmania. Para Giardia, fezes fraîches são o caminho, mas o ideal é usar imunocromatografia ou ELISA junto com o exame direto para compensar a baixa sensibilidade do esfregaço simples.
Materiais de coleta por protozoário
Aqui vai um resumo prático do que funciona e do que não funciona: Leishmania infantum: medula óssea (fêmur ou crista ilíaca), aspirado de linfonodo poplíteo ou mandibular, biópsia de pele. Sangue EDTA também pode ser usado para PCR, mas a sensibilidade é menor. O material ideal para citologia direta é o linfonodo, com sensibilidade entre 70 e 85%. Para PCR, a medula óssea atinge cerca de 90% de sensibilidade.
Giardia spp.: fezes. O exame direto com lugol ou azul de metileno detecta cistos, mas a sensibilidade é de apenas 50 a 60% em uma única amostra. O ideal é coletar três amostras em dias consecutivos e usar teste imunocromatográfico (ICT) ou ELISA, que chegam a 85-95% de sensibilidade. Não use formalina para Giardia — o cisto se degrada e o resultado fica falso negativo. Toxoplasma gondii: sangue EDTA, líquor, aspirado de linfonodo, fluido peritoneal ou pleural. A PCR em sangue é sensível, mas pode ser negativa na fase crônica. O líquor é o melhor material para toxoplasmose neurológica. Anti-corpos IgM e IgG por IFAT ou ELISA ajudam no diagnóstico sorológico.
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Trypanosoma cruzi: sangue periférico heparinizado ou EDTA. A sensibilidade é maior na fase aguda, quando a parasitemia é alta. O método de Schoutten (concentração por centrifugação) aumenta a detecção. PCR em sangue também é útil, mas em endemias com baixa carga parasitária, o exame direto pode falhar. Trichomonas felis (em cães também descrito): swab retal ou fezes. O exame direto com gota fisiológica aquecida mostra protozoários móveis. O cultivo em meio especial aumenta a sensibilidade, mas a maioria dos laboratórios não faz.
Problemas reais que eu encontro no laboratório
Já vi veterinário enviar fezes de cão com leishmaniose suspeita e reclamar que o exame deu negativo. O problema não é o teste, é o material. Leishmania não está nas fezes. Também já perdi a conta de quantas Giardia passaram batido porque o técnico usou formalina 10% para preservar a amostra. O cisto rompe e some. Fezes devem ser examinadas frescas ou conservadas em soluções específicas como PVA ou formol acetato. Um caso que marca é de um cão pastor alemão com perda de peso e lesões cutâneas. O exame de fezes foi negativo para Giardia, mas o ICT foi positivo. O exame direto tinha perdido por causa da coleta incorreta. Isso mostra que o método complementar faz diferença real no diagnóstico.
O que não funciona
Exame direto de fezes como único método para Giardia. A sensibilidade isolada é insuficiente para descartar a doença. Sorologia para Leishmania como único critério de diagnóstico. Anticorpos permanecem positivos mesmo após cura, então positividade isolada não confirma doença ativa. PCR sem controle de qualidade. Contaminação de amostras é comum e gera falsos positivos. Sempre usar controles positivos e negativos em cada lote.
Conduzindo o diagnóstico corretamente
Comece pelo material certo. Se a suspeita é Leishmania, colete medula óssea e aspirado de linfonodo. Se é Giardia, colha fezes frescas e faça ICT ou ELISA junto. Se é Toxoplasma, considere líquor e PCR. E sempre documentar o método de coleta e conservação, porque erro aí compromete tudo que vem depois.
